qPCR结果异常原因分析及解决方案 |
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问题分析:基因的扩增效率降低导致Ct值偏大;基因本身的转录水平低导致的Ct偏大; 解决方法:可将基因的扩增产物进行梯度稀释,同时进行 qPCR,将得到的标准曲线进行引物扩增效率的计算。通过标准曲线可以得到线性方程,将线性方程得到的斜率(K)带入扩增效率计算公式中:e=10[-1/k]-1;只有当扩增效率满足90~120%,且标准曲线R2 ≥ 0.99,引物的扩增效率才是合格的,定量出来的Ct值才可以用来计算,且扩增效率越接近100%,引物的扩增性能越优;若判断为扩增效率较低,主要为反应条件不适宜或者引物设计不合理,应重新优化反应体系或者引物设计。 基因本身的转录水平低可以适当提高上样模板的量以降低Ct值在合理的范围之内。 4、没有荧光信号 可能原因及解决方法: A 没有信号采集步骤:每个扩增循环结束后,设置收集步骤; B 体系蒸发:用专用的高质量8联排管盖或用封膜仪封板。 C 没有扩增: 可通过2%琼脂糖凝胶电泳对qPCR产物进行跑胶检测(120v,20min左右),看是否有条带。如果没有条带或者条带弥散,可能是引物或模板有问题,也可能是基因表达量太低。 D 模板浓度太低:如果内参没有有信号或内参CT值大于25,说明浓度太低。或者模板存在PCR抑制剂,建议重新制样后再检测。 二、扩增曲线问题 1、扩增曲线无法达到平台期 原因分析:基因丰度较低。 解决方法:增加循环数或者增加上样的模板量,或选择适用于低丰度模板的试剂盒。 2.扩增曲线平台期下降 原因分析:模板量过高及基线设置不当。 解决方法:减小基线的终点值,一般情况下选择Ct-4; 3.平台期锯齿状 原因分析:RNA纯度低,杂质所造成的干扰;仪器需要校准; 解决方法:增加稀释倍数优化反应,或者重新制备高纯度的RNA模板; 校准仪器即可; 4.扩增曲线杂乱无规律 原因分析:可能是ROX浓度和机型不匹配,建议调整ROX浓度;一般情况下所购买的试剂ROX的配比已经是调整好的,只需要按照说明进行配置qPCR反应体系和上机的操作。 解决方法:可以在仪器上将参比染料设置由ROX更改为NONE,取消ROX的校正功能,查看扩增曲线是否恢复正常,即可判定是否是ROX导致的。 5. 有溶解曲线无扩增曲线 原因分析:反应程序问题,扩增阶段未收集荧光信号; 解决方法:检查程序设置; 6.反应结束无扩增曲线出现 原因分析:反应循环数不够;程序中未设置采集荧光信号步骤;模板量太低; 解决方法:增加循环数,一般设置到40即可;检查qPCR反应程序,添加荧光信号采集步骤;可能为目的基因的含量低导致,可用高浓度的上样量进行试验,或者重新提取模板进行试验; 7. 复孔的扩增曲线平台期不一致 原因分析: 主要由于复孔之间的细小差距导致的平台期的荧光信号差异较大;模板多加或少加。 解决方法: 确保准确加样,复孔之间 只要ΔCt |
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